Dışkı muayenesi dışkı (dışkı) bağırsak parazitleri tespit etmek için incelenmiştir olduğu bir laboratuvar çalışmasıdır. Başlangıçta 18. yüzyılda Anton Van Leeuwenhoek tarafından geliştirilen en basit ve en eski laboratuvar tekniklerinden biridir.
Mikrobiyolojinin babası olarak kabul edilen Anton Van Leeuwenhoek, kendi dışkısını gözlemlemek için "doğrudan" koproparasitoskopik yöntemi kullandı ve yıllar sonra insanın ince bağırsağını işgal eden bir protozoan olan Giardia lamblia'nın trofozoitleri olarak tanımlanan şeyi tanımladı.
Ascaris lumbricoides yetişkin formu (Kaynak: Wikimedia Commons)
Paraziter hastalıklar, özellikle dışkıların atılması ve kirli su tüketimi ile ilgili sağlık koşullarının kötü olduğu yoksul veya az gelişmiş ülkelerde, dünyada milyonlarca insanı etkilemektedir.
Bu hastalıkların teşhisi yeterli bir tedavi için önemlidir, koproparasitoskopik muayene bunun için vazgeçilmez bir araçtır. Basit, hızlı ve ucuz bir laboratuvar testidir.
Dışkı muayenesi, yumurtaların, trofozoitlerin, kistlerin veya larvaların doğrudan görselleştirilmesine ve miktarının belirlenmesine ek olarak, mikroorganizmanın yapılarının tanımlanmasına ve böylece parazitin tanımlanmasına izin veren birkaç teknik içerir.
Dışkı incelemesi için kullanılan teknikler arasında metilen mavisi boyama teknikleri, konsantrasyon yöntemleri, Faust, Richie tekniği, sedimantasyon teknikleri ve doğrudan, tekli veya seri incelemeler bulunur.
Ascaris lumbricoides'in döllenmemiş yumurtası. (Kaynak: Hastalık Kontrol ve Önleme Merkezleri, Wikimedia Commons aracılığıyla).
Örnekleme
Bu çalışmayı gerçekleştirmek için hastanın idrar, su, kan (adet) veya toprakla kontamine olmayan taze bir dışkı örneği alması gerekmektedir. Numune ceviz büyüklüğünde olmalı veya sıvı ise en az iki yemek kaşığına karşılık gelen hacimde olmalıdır.
Hasta, numuneyi almadan en az üç gün önce veya doktorunun belirttiği süre boyunca parazit öldürücü ilaç almamış olmalıdır. Ayrıca müshil ilaçlar kullanmamalısınız.
Numuneler, kuru, geniş ağızlı, kapaklı bir kaba veya özel olarak tasarlanmış tek kullanımlık bir kaba (tercih ettiğiniz eczaneden temin edilebilir) yerleştirilmelidir. Örnekler serin bir ortama yerleştirilmeli, 24 saatten fazla buzdolabında saklanmamalı ve ısı kaynaklarının yakınında veya donmuş halde saklanmamalıdır.
Belirtilen inceleme seri olduğunda, doktorun belirttiği şekilde her 24 saatte bir veya daha fazla alınması gereken en az üç numune gereklidir. Bu durumlar için, laboratuvarlar genellikle koruyucular içeren solüsyonlar içeren bir dizi şişe sağlar.
Hasta dışkıda bir miktar "solucan" gözlemlediğinde, mümkünse, onu suyla birlikte kapalı bir şişeye koymalı ve dışkı örneğinin şişesiyle birlikte laboratuvara götürmelidir.
Numunelerin veya "solucanların" bulunduğu şişeler etiketlenmeli ve hastanın adı, yaşı, cinsiyeti ve numune toplama tarihi ve saati ile tanımlanmalıdır.
Hastaya, numunelerin alınması ve işlenmesinin tüm bu yönleri hakkında yeterince talimat vermek çok önemlidir, çünkü söz konusu numunede mevcut olabilecek unsurların gözlem, tanımlama ve teşhis için geçerli kalması buna bağlıdır.
Teknikler
Yanlış negatifleri önlemek ve çok daha temiz numuneleri gözlemlemek için defalarca kullanılan numunelerin direkt koproparasitoskopik incelemeleri ve süspansiyon ve konsantrasyon teknikleri bulunmaktadır. Bazı parazitleri tanımlamak için bazı boyama teknikleri de kullanılır.
Doğrudan sınavlar
Bekleyen damla tekniği kullanılarak yapılan doğrudan dışkı muayenesi, dışkı örneğinin fizyolojik solüsyonla (% 0,9 NaCl) seyreltilmesi ve bu solüsyonun bir damlasının özel kullanılmış bir lamı olan bir konkaviteye yerleştirilmesinden oluşur. bu son için.
Damla slayta yerleştirildikten sonra bir lamel ile kapatılır ve mikroskop altında gözlenir. Bu teknik, yumurtaları ve kistleri gözlemlememize izin verir, ancak aynı zamanda kamçılılar, larvalar, trofozoitler, siliatlar vb. Gibi herhangi bir hareketli unsuru da gözlemlememizi sağlar.
Süspansiyon ve konsantrasyon teknikleri
Süspansiyon teknikleri, gözlenecek elementlerden daha yoğun bir çözelti kullanır, böylece bunlar sıvının yüzeyinde yüzer ve çözeltinin yüzey tabakasında konsantre kaldıklarından toplanabilirler.
Bu tekniğin avantajı, oldukça temiz bir döküntü numunesine sahip olma avantajına sahiptir, çünkü bunlar daha yoğun olduğundan şişenin dibinde kalır. Göreceli dezavantaj, solüsyonun mikroorganizmaları kısa sürede küçülterek deforme etmesidir.
Bu yöntemler helmint ve sestod yumurtaları için çok ağır oldukları ve bu solüsyonlarda yüzmedikleri için kullanılmazlar. Tropozoik formlarında protozoayı veya yumurtalarını gözlemlemek ve Strongyloides stercoralis gibi larvaları gözlemlemek için yaygın olarak kullanılırlar.
Örnekteki mikroorganizmaları deforme etmediği ve basit ve ekonomik olduğu için yaygın olarak kullanılan bir diğer teknik formalin sedimantasyon tekniğidir.
Konsantrasyon tekniklerinin örnekleri arasında Faust ve Richie'nin teknikleri bulunur.
Boyama teknikleri ile birlikte yumurta, larvalar veya farklı bağırsak parazitlerinin diğer elementlerinin mikroskobik olarak görüntülenmesini sağlayan farklı teknikler, bu hastalıkların tanımlanmasına ve teşhisine olanak sağlar.
Örnekler
Daha sonra, bir klinik vaka anlatılır ve tedavinin yararlarının teşhisi ve değerlendirilmesi için dışkı incelemesinin yararlılığını gösteren bazı görüntüler gösterilir.
Trichuris trichuria yumurtası (Kaynak: CDC / Dr.Mae Melvin, Nezaket: Wikimedia Commons aracılığıyla Halk Sağlığı Resim Kitaplığı)
18 yaşında erkek hasta, periumbilikal bölgede daha şiddetli kolik karın ağrısı, bulantı ve sulu ishal atakları nedeniyle doktora geldi.
Doktor hastayı sorgularken iki dikkat çekici noktaya dikkat çekti: 1) hasta kırsal bir bölgede bir gölde yıkandığını bildirdi ve 2) tuvalette dışkısının yüzdüğünden şaşkına döndü. Doktor, hastayı muayene ettikten sonra Giardia lamblia'nın varlığından şüphelenir.
Giardia lamblia yaşam döngüsü (Kaynak: LadyofHats, Wikimedia Commons aracılığıyla)
Bu protozoan, insanın ince bağırsağında bulunur ve yağların emilimini engeller, bu da yüzmeye eğilimli çok yağlı dışkı oluşturur. Kirlilik, genellikle kırsal alanlardaki göl veya akarsulardaki kirli sudan veya bakımsız havuzlardan veya sıcak su havuzlarından kaynaklanır.
Giardia lamblia trofozoitleri (Kaynak: Fotoğraf: Eva Nohýnková, Tropikal Tıp Departmanı, 1. Tıp Fakültesi, Prag Charles Üniversitesi ve Bulovka Hastanesi, Çek Cumhuriyeti. Marie Lipoldova, Moleküler ve Hücresel İmmünoloji Laboratuvarı, Moleküler Enstitüsü'nün kağıtta görüntüsü. Genetik, Çek Cumhuriyeti Bilimler Akademisi, Prag, Çek Cumhuriyeti, Wikimedia Commons aracılığıyla)
Doktor dışkı muayenesi yapılmasını ister ve sonuçlar Giardia lamblia'nın varlığını doğrular. Tedavinin sona ermesinden sonra, Giardia lamblia kistlerinin veya trofozoitlerinin olmadığını doğrulamak için başka bir dışkı incelemesi endikedir.
Referanslar
- Buonfrate, D., Mena, MA, Angheben, A., Requena-Mendez, A., Muñoz, J., Gobbi, F.,… & COHEMI Proje Çalışma Grubu. (2015). Latin Amerika'da Strongyloidiasis prevalansı: literatürün sistematik bir incelemesi. Epidemiyoloji ve Enfeksiyon, 143 (3), 452-460.
- Haro Arteaga, I. ve Ruiz, AEC (2014). Teşhisi. Tıbbi parazitoloji (4a, 347.
- Mendoza, D., Nunez, FA, Escobedo, AA, Pelayo, L., Fernandez, M., Torres, D. ve Cordovi, RA (2003). 2 koproparasitolojik yöntemin kullanışlılığı ve bunların bir antigiardiasis terapötik denemesinde kullanımı. Küba Tropikal Tıp Dergisi, 55 (3), 174-178.
- Fiyat, -DL (2017). Bağırsak parazitlerinin teşhisi için prosedür kılavuzu. CRC Basın.
- Şahin, I., Kiliç, H., Özca, M. ve Orhan, R. (1984). Milli takımın güreşçileri üzerine bir kopro-parazitolojik çalışma. Mikrobiyoloji bülteni, 18 (2), 114-118.